Director: Guillermo Alejandro Bavera, Méd. Vet.,
Profesor Titular Efectivo de Producción Bovina de Carne, Depto. Producción
Animal,
Facultad de Agronomía y
Veterinaria, Universidad Nacional de Río Cuarto, Río Cuarto,
provincia de Córdoba, República Argentina
volver a: principal > Inseminación artificial
Pablo Javier Bussi. M.V.
- UNRC - Actividad Privada.
La
inseminación artificial (IA) es la técnica más importante desarrollada para el
mejoramiento genético de animales (27), un grupo de machos estrictamente seleccionados
y genéticamente superiores al producir gran cantidad de espermatozoides son
suficientes para inseminar miles de hembras por año.
El
gran desarrollo genético logrado en ganado lechero se debe al uso masivo por
medio de IA de toros cuidadosamente seleccionados a través de las pruebas de
progenie.
En
ganado de carne el desarrollo de la IA ha sido más lento debido a las
limitantes de personal entrenado, instalaciones, etc.
Almacenamiento del semen
El
factor clave para la preservación de las gametas por largo tiempo es la baja
temperatura (27). En el caso del semen, la temperatura de conservación debe
mantenerse por debajo de -130°C para conservar el máximo de
fertilidad. Cuando se expone a temperatura ambiente, la temperatura del semen
aumenta rápidamente, debido a la relación volumen-superficie de la dosis,
siendo las pajuelas muy susceptibles a estos cambios de temperatura.
Almacenar
las pajuelas en gobelets plásticos reduce el rango de cambio de temperatura,
siendo importante para minimizar estos cambios mantener los gobelets con
nitrógeno líquido (N2) durante la manipulación de las pajuelas.
Si
la temperatura del semen supera los -130°C, los espermatozoides comenzarán a
sufrir daño irreversible, debido al proceso de recristalización.
Descongelación del semen
Barth
et al, evaluó distintos métodos de descongelación de semen, utilizando para
ello semen congelado con distintos medios en ampollas de 1 ml y pajuelas de 0,5
ml. Los resultados mostraron que el baño a 35°C fue el mejor método para ambos tipos
de congelación. También comparó distintos tiempos de exposición a esta
temperatura, comprobando que el semen después de una exposición de 12 segundos
a 37°C, solamente alcanzaba 0°C, lo que provocaba shock térmico y
pérdidas de motilidad, actividad metabólica, capacidad fertilizante y lesión de
la membrana plasmática. Barth concluyó que la exposición de 30 segundos a 35°C le permitía al semen alcanzar la
temperatura de 30°C y no sufrir shock térmico.
En
otro experimento Senger et al (22) descongelaron pajuelas de 0,5 ml a dos
temperaturas diferentes (5 y 35°) para luego exponerlas a diferentes
temperaturas, imitando las distintas posibilidades de temperatura ambiente,
entre 1°C, 20°C y 37°C. Los mejores resultados,
expresados en motilidad espermática e integridad de acrosoma fue con 35°c y luego mantenidos entre 20 °C y 37°C.
Sobre
la base de estos trabajos se puede concluir que la metodología ideal para
descongelar pajuelas es en agua a 35-37°C durante 30 segundos; en caso de
utilizar pastillas el tiempo de descongelación se lleva a 1 minuto.
Concentración espermática
El
porcentaje de preñez puede verse afectado por la cantidad de espermatozoides
por dosis. En un experimento Sullivan (43) mostró que los toros responden de
diferentes maneras a los cambios de concentración espermática. Dividió los
toros en grupos por nivel de fertilidad de acuerdo al porcentaje de no retorno:
bajo 72,6%; medio 75,4% y alto 77,9%. Cuando aumentó progresivamente la
concentración espermática de 5 a 10 millones hubo un beneficio en los grupos de
toros de menor fertilidad, pero no se pudo explicar porqué disminuyó el
porcentaje de no retorno en los toros del grupo de mayor fertilidad.
Al
descongelado la dosis de semen debe contener al menos 10 millones de
espermatozoides mótiles, los toros con fertilidad menor al promedio se beneficiarían si se aumenta la
concentración a 15 millones o más por dosis (27).
Sitio de deposición del semen
El
proceso de transporte espermático en el tracto reproductivo de la hembra consta
de dos fases, una rápida y otra prolongada (27). En la rápida, los mecanismos
fisiológicos del tracto femenino transportan los espermatozoides hasta el
oviducto sin la participación activa de estos. Durante la fase prolongada los
espermatozoides pueden permanecer hasta 18 horas en la región caudal del istmo
del oviducto para alcanzar el sitio de fertilización cerca de la unión del
istmo con la ampula (27). Suga y Higaki (44) en un experimento depositaron 300
millones de espermatozoides en el cuerpo del útero de vacas lecheras, luego
recogieron los tractos reproductivos completos en matadero para verificar la
distribución de los espermatozoides, los resultados mostraron que entre 30 y 60
minutos después de la IA la mayoría de los espermatozoides fueron recuperados de
la vagina y cervix y sólo unos cuantos fueron recuperados del útero. En otro
experimento Larsson y Larsson (29) dos
horas después de depositar semen en el cuerpo del útero recuperaron el 14,6%
del semen total y de ese 14,6% el 98,5% estaba en vagina y cervix. A las 12
horas post IA recuperaron el 0,6% de lo inseminado, de esto el 73,7% estaba en
vagina y cervix. Dobrowolski y Hafez (21) depositaron 2.000 millones de
espermatozoides en vacas Hereford y realizaron necropsia a las vacas 1, 8 o 24
horas posteriores a la IA. Del total de espermatozoides depositados en el
cuerpo del útero, sólo el 13,4% se recuperó 1 hora mas tarde, el 3,8% a las 8
horas y el 0,9% a las 24 horas en el útero (27). Si una dosis de semen para IA
contiene entre 10 y 30 millones de espermatozoides, luego de 24 horas de la IA
en útero encontraremos entre 10.000 y 100.000 espermatozoides (27).
Se
cree que los espermatozoides que son transportados rápidamente a los oviductos
después de la IA no están involucrados en la fertilización. Los resultados de
un trabajo de Wilmut (46) mostraron que
los espermatozoides que entran al oviducto rápido después del servicio no
permanecen en el mismo, o si está presente en el momento de la ovulación, no
son capaces de fertilizar el ovocito.
Estos
resultados demuestran que los espermatozoides capaces de fertilizar alcanzan el
oviducto cerca de 8 horas después del servicio y son almacenados en el istmo
del oviducto por 18 horas o más hasta el momento de la ovulación (27).
Senger
(41) y Davos (20) en distintos experimentos reportaron mejoras en la fertilidad
cuando se realizó siembra de semen en ambos cuernos, sin embargo Marshall (32)
mostró un leve efecto negativo con esta metodología. Larsson (28) demostró la migración transuterina después de la IA
en vaquillonas recuperando espermatozoides en el cuerno uterino opuesto al que
se había realizado la siembra, siendo capaces de fertilizar ovocitos de ambos
ovarios.
Gallager
y Senger (25) demostraron que no existen diferencias en la eliminación de
espermatozoides cuando la siembra se realiza en cuernos o en el cuerpo del
útero, pero sí hay diferencias cuando se toman las mismas muestras comparando
siembra en los cuernos y cervix.
Otro
factor importante es el momento de IA. En un experimento Macmillan y Watson
(31) inseminaron un grupo de vacas durante el comienzo, la mitad, el final y
después del estro con semen de toros cuyos porcentajes de fertilidad eran:
inferiores al promedio, dentro del promedio o sobre el promedio. Los resultados
demostraron que la fertilidad del semen de toros con baja fertilidad puede ser mejorada retrasando el momento de
la IA hasta después del final del estro, pero siempre varias horas antes de la
ovulación.
Inseminación Artificial en rodeos lecheros
Servicio Programado - Programmed Breeding
Servicio
programado es todo aquél método que permite planificar y controlar un programa
de inseminación de vacas en lactancia. Las vacas ciclan normalmente entre 17 y 24
días (1) y por lo general no están sincronizadas entre sí. El servicio
programado nos permite formar grupos de inseminación homogéneos.
Ventajas
de programar ciclos estrales:
√
Programar tareas.
√
Manejo del estro, ovulación o ambos.
√
Conocimiento del estadio del ciclo estral y estado reproductivo de las vacas.
ã Grupos de servicio - Breeding Clusters
Organización
de grupos de vacas para servicio programado (24,45). Considerando el período de
espera voluntario (PEV) se pueden organizar grupos sincronizados para que
entren en celo y ovulen en un período de tiempo determinado (días de ordeñe).
Tomando
como referencia un PEV de 50 días, el grupo estaría formado por vacas con 70-50
días de ordeñe, de manera que las últimas vacas que parieron alcancen el PEV
mínimo determinado. Este grupo estaría
formado entonces por vacas que parieron en un período de 3 semanas.
En
rodeos mayores a 200 vacas es aconsejable formar los grupos de sincronización
con vacas cuyo lapso de parición sea de dos semanas (45).
El
celo y la ovulación se sincronizan para que ocurran durante la semana siguiente
al PEV mínimo determinado.
ã Programa de reproducción controlada -
Targeted Breeding™
Promocionado
por el laboratorio Pharma & Upjohn, para sincronizar vacas en lactancia
(34). Este programa se basa en la aplicación de dos dosis de PGF 14 días
aparte. La primera PGF debe ser aplicada 14 días antes de finalizado el PEV.
Luego de esta primera inyección ninguna vaca es IA, aunque hasta un 50% de las
vacas puede mostrar celo. Se recomienda
que si luego de la segunda inyección de PGF no se detecta celo, se debe aplicar
una tercera dosis 14 días más tarde. Si luego de esta tercera inyección no se
detecta celo evidente se realiza inseminación artificial a tiempo fijo (IATF)
72 - 80 horas posteriores a la PGF (45).
ã Programa de reproducción controlada
modificado
También
promocionado por Pharma & Upjohn para sincronizar la inseminación de vacas
en lactancia. Este programa fue diseñado para forzar a la mayoría de las vacas
a una fase luteal temprana mediante una inyección pre-sincronizadora de PGF 14
días antes de la administración de GnRH. Esta GnRH es administrada 7 días antes
de la segunda inyección de PGF (8, 45).
La
GnRH altera el crecimiento folicular induciendo la ovulación del folículo
dominante formando un cuerpo lúteo (CL) nuevo o adicional (8, 37). Así un nuevo
grupo de folículos emerge de los ovarios 1 o 2 días después de la administración
de la primera inyección de GnRH (37, 45), de este grupo de folículos emerge un
nuevo folículo dominante, que madura y ovula después que el estro sea inducido
por la PGF (45). Luego de la inyección
de PGF se puede inseminar a celo detectado o realizar una IATF 72 - 80 horas
posteriores a la PGF.
ã Ovsynch™
Programa
similar al anterior, pero a diferencia de este no es necesaria la detección del
celo. En realidad es un programa de sincronización de la ovulación. Consiste en
la aplicación de una inyección de GnRH 7 días antes de la PGF. Cuarenta y ocho
horas después de la PGF se aplica otra dosis de GnRH y se realiza IATF 0 - 24
horas más tarde. La primera GnRH induce
el desarrollo de un folículo dominante en condiciones de ovular (4, 8, 45) o
regresa resultando en una nueva onda de crecimiento folicular dentro de los 2 o
3 días (7, 47). Tras la segunda GnRH, a
falta de altas concentraciones de progesterona (P4) luego de que la PGF lisa el
CL, se induce un pico preovulatorio de LH y el folículo ovula en las siguientes
24 - 36 horas. Si se detectan vacas en celo en cualquier momento de la
sincronización, estas deberán ser inseminadas y las inyecciones de PGF, GnRH o
ambas deberán ser suprimidas (45, 48). Cuando se aplico este programa en vacas
sometidas a stress por calor se incrementó la tasa de preñez al inseminar mayor
número de animales (27).
ã Uso de CIDR-B en rodeos lecheros
4 Tratamiento del
anestro
Una
causa común de retraso en la concepción es el anestro postparto anovulatorio
(30). Cuando la involución uterina fue normal, las vacas pueden ser tratadas a
los 21 días del parto, aunque la preferencia es tratar las vacas a partir del
día 28, mayores tasas de preñez pueden obtenerse con intervalos postparto
mayores (3,30,35). El tratamiento temprano iniciado una semana antes de la
finalización del PEV puede resultar en que las vacas tratadas tengan similar
fecha promedio de preñez que sus compañeras (2,30). Se prefiere el uso de tratamiento con resincronización sobre el
standard. La resincronización debe comenzar el día 13 (±
1 día) posterior al pico de inseminación junto con la inyección de benzoato
de estradiol (EB) para estimular el
recambio de la onda folicular y para actuar como gatillo del inicio
sincronizado del folículo ovulatorio (6,15,30) . Es importante que el CIDR
quede colocado durante 8 días y sea retirado antes del día 22 post pico de IA
para lograr la máxima fertilidad (3,30). La inyección de EB a las 24 horas de
retirado el CIDR incrementa la tasa de celo y concentra los retornos (30). El
uso del CIDR sin administrar EB puede no ser efectiva y resultar en menor
fertilidad, por lo tanto no es recomendable (30[a1][a2]).
4 Programas Controlados de Reproducción (PCR)
Los
PCR para rodeos lecheros incluyen la sincronización de todo el rodeo o grupos de
vacas, seguida de resincronización para una segunda y tercera ronda de IA (30).
Puede
ser utilizado para agrupar vacas y tiene como ventaja en que la detección de
celos e IA se realiza en tres días dentro de cada ronda (30). El programa puede
comenzar 8 días antes de finalizado el PEV determinado. Ese día se aplica el
dispositivo más la inyección de EB (30), al octavo día se combina la retirada
del CIDR con una inyección de PGF. Veinticuatro horas más tarde se aplica otra
inyección de EB (3,4, 7,15,30). Los tratamientos de resincronización comienzan
13 días mas tarde del pico de IA para sincronizar la emergencia de una nueva
onda folicular (6,15,30).
Inseminación Artificial en rodeos de carne
ã
Programas de sincronización con PGF
La
PGF y sus análogos son los más utilizados en programas de sincronización de
celos (4). Un protocolo muy común es el de dos tratamientos con PGF 11 días
aparte, sin embargo trabajos recientes indican que la fertilidad es mejor cuando
se administran dos inyecciones de PGF con una diferencia de 12 a 14 días,
protocolo actualmente muy utilizado (4,22). Butler y Cesaroni (13) reportaron
preñeces promedio del 42% en trabajos de IATF a las 72 y 96 horas de la segunda
PGF. En otro trabajo Péndola y Piramidani (36) reportan una preñez promedio del
46,45% con IATF a las 60 horas de la
segunda PGF. Otros autores reportan buenos porcentajes de preñez en programas
de dos tratamientos de PGF 14 días aparte detección de celos e IATF a toda
hembra no detectada en celo a las 80 horas de la segunda PGF.
ã Ovsynch™
Igual
tratamiento al utilizado en rodeos lecheros. En vaquillonas presenta
variabilidad en los resultados (rango de preñez 35,1% a 72,7%) (16), siendo más
efectivo en vacas con cría
y
logrando preñeces similares a las obtenidas con PGF más detección de celos e IA
(1, 16). En hembras cebú se ha utilizado un programa modificado inyectando EB
en lugar de la segunda GnRH e IATF a las 30 - 34 horas del EB, logrando
preñeces promedio del 43 % (1). Colazo
y otros (18) en vacas Hereford con cría (70-138 días post parto) reportan una
preñez de 62,5 % con IATF a las 60 horas de la PGF. Meana Irigoyen y otros (33)
en vaquillonas Hereford obtuvieron una preñez del 54,5 % con IATF a las 15
horas de la segunda GnRH. Crudelli, en vacas Braford obtuvo una preñez del 38%
(31/82) y 41% (21/51) en dos sincronizaciones. Sabbione y Becerra (38) en vaquillonas Angus obtuvieron un 64,7 y
42,8 % de preñez, en ambos trabajos la IATF se realizó entre las 48 y 57 horas
de la segunda PGF. Carcedo y otros (17) reportaron preñeces del 33,3% (32/96),
43,6% (41/94), 32% (31/97) y 35% (21/6) en distintos trabajos realizados.
Evaluamos la preñez en vaquillonas Brangus y vacas secas Brangus obteniendo el
40,0% y el 42,0% en vaquillonas y vacas respectivamente, lo que confirmaría que
este tipo de tratamientos es más efectivo en vacas (11). Sin embargo en otra
experiencia obtuvimos en vaquillonas Limangus un 45% de preñez coincidiendo con
lo afirmado por Callejas (16) sobre la variabilidad de los resultados en
vaquillonas.
ã Norgestomet
Es un progestágeno sintético utilizado en dos implantes, Syncro-Mate-B (SMB,
Merial) y Crestar (Intervet). Estos implantes se aplican subcutáneamente en la
oreja y vienen acompañados de una inyección de 5 mg de Valerato de Estradiol
(EV) y 3 mg de Norgestomet (N) que se administran al momento de colocar el
implante. El tiempo de aplicación del implante es de 9 días.
4 Norgestomet combinado con PGF
Recientemente
se ha cuestionado la acción luteolítica del E2 cuando se lo aplica en las fases
tempranas del ciclo. En un experimento de Intervet hay una diferencia del 10%
de preñez favorable a las vacas que recibieron PGF. En este tratamiento se
combinó también con 500 UI eCG (PMSG) al retirar el implante.
Porcentaje de preñez en vacas en lactancia utilizando diferentes
combinaciones de Crestar
N Crestar + PGF 2 días 500
UI eCG % Preñez
EV + N antes retirar al retiro con IA
56
+ - - 47
64
+ - + 50
60
+ + - 59
60
+ + + 65
Adaptado de PC Nelis, Compendium of Animal
Reproduction, Intervet, 1995,32
Porcentaje de preñez en vaquillonas y vacas de carne utilizando SMB más
PGF al retirar
Categoría CC IPP N Pñs % Pñz
Vq. 20 meses 3-3,5 57 28 49,12
Vq. 24 meses 3,5 100
61 61,00
Vcs c/c + DT 48 3-3,5 60 243 122 50,20
Vcs c/c + DT 48 2-2,5 45 100 35 35,00
Bussi, PJ. 1998. (9)
4 Norgestomet combinado con GnRH
Este
protocolo ha sido desarrollado hace poco tiempo en un experimento en el cual se
combinó GnRH al final del tratamiento para inducir la ovulación. Los implantes
fueron removidos a los 9 días y la mitad de las vaquillonas recibieron una inyección
de 100 mg de gonadorelin (Cystorelin, Merial) 30 horas
después. Como en un experimento de Martínez et. al , el tratamiento de EV y N
indujo la regresión del folículo dominante existente y el crecimiento de una nueva
onda entre 4 y 7 días después. En cuanto a la ovulación fue más sincrónica
(56-64 horas) y la preñez numéricamente mayor.
4Norgestomet combinado con EB
Otra
alternativa de inducción de la ovulación es utilizar 0,5 a 1 mg de EB a las 24
horas de retirado los implantes e IATF entre las 50 y 52 horas pos retiro. En
trabajos preliminares administrando 0,5 mg de EB a las 24 horas de retirado SMB
en vacas Hereford resultaron preñadas 11 de 23 (47,82%) (3). Otros trabajos
experimentales (3) utilizaron Crestar combinado con PGF 2 días antes del
retiro, PMSG al retirar, EB a las 24 horas de retirado Crestar e IATF a las 50
- 52 horas de Crestar resultaron 20/50 vacas preñadas (40%), PGF más PMSG día
6, PMSG al retirar Crestar, EB a las 24 horas e IATF a las 50 - 52 horas de
retirado Crestar resultaron 21/50 vacas preñadas (42%). Bó y col en un programa
de IATF con SMB combinado con PGF día 6 más EB a las 24 horas de retirado SMB
(día 10) e IATF obtuvieron una preñez del 61,45% (51/83). Otros profesionales
reportaron una preñez del 55,70% (39/70) utilizando SMB con EB a las 24 horas
de retirado el implante e IATF a las 50 horas de retirado SMB. En nuestra
experiencia la preñez promedio es del 42% con tratamientos de SMB 9 días más EB
a las 24 horas de retirado e IATF a las 50 horas. En todos los casos combinamos
el retiro del implante con un destete temporario.
4 Norgestomet combinado con PMSG (eCG)
La
combinación con PMSG al final del tratamiento para estimular el desarrollo
folicular fue estudiada para ser utilizada en vaquillonas, vacas con cría o
vacas lecheras en lactancia (27). Una revisión reciente de investigadores
europeos indica que con este tratamiento el grado de ciclicidad de los animales
influye drásticamente sobre el porcentaje de preñez final, siendo
aproximadamente un 60% en vacas cíclicas y un 40% en vacas en anestro. Scena y
Butler (35) han reportado una preñez
del 52% utilizando Crestar combinado con 500 UI de PMSG al retirar el implante
en vacas Hereford IATF a las 48 horas de retirado el implante. Scena y col (40)
en otro experimento en este caso con vacas Brahman en anestro obtuvieron un
porcentaje de preñez del 38,5 y
46,7% respectivamente. En otro
trabajo Finelli y col (23) en vaquillonas cruza cebú anestricas entre 18 y 20
meses reportaron una preñez del 44,4%
utilizando Crestar combinado con 600 UI de PMSG al retirar el implante.
Nosotros utilizamos 300 UI en
vaquillonas y 400 UI en vacas, en ambos casos la inyección de PMSG se aplica al
momento de retirar el implante y se IATF a las 48 horas. El porcentaje de
preñez promedio obtenido es del 50,19 y 50,12% para vaquillonas y vacas
respectivamente (9).
ã
CIDR-B / DIV-B
El
tratamiento con progestágeno y estradiol-17b
(E-17b), administrados en cualquier momento del ciclo
estral, inducen el crecimiento sincrónico de una nueva onda folicular
aproximadamente 4 días más tarde (5,14). La sincronización es efectiva cuando
se administra el EB un día después de la inserción del dispositivo de
progestágeno, o combinado con P4 inyectable en el mismo momento de la inserción
(5,6,12,14).
En
un experimento se observó que el pico de LH ocurre en promedio 16,1 hora pos-EB
y a ovulación ocurría a las 40 horas pos-EB (64 horas después de la remoción del
CIDR-B). Esto determinó que se deba IATF a los animales a las 52 horas de retirado el CIDR-B (7,26). Butler y col.
(12) evaluaron la tasa de preñez a IATF posterior a diferentes tratamientos
durante de CIDR 7 días. Al momento de la inserción se inyectó
3 mg de EB, en el día 6 se inyectó PGF, el día 7 al momento de la extracción
las hembras fueron divididas en tres tratamientos; T1 inyección de EB al retiro
del CIDR, T2 inyección de EB a las 24 horas de retirado CIDR y T3 inyección de
buserelina en el momento de la IATF. Los resultados de preñez obtenidos fueron: 53,9%, 49,2% y 62,1% para los tres
tratamientos respectivamente. Se ha demostrado que la GnRH es capaz de inducir
ovulación en vacas amamantando, estando el folículo dominante en fase de desarrollo
y meseta (5,15,30,46,49). Péndola y Piramidani (36) en tratamientos de CIDR por
8 días combinado con EB al momento de aplicar el dispositivo, PGF más destete
temporario al retiro del CIDR, EB a las 24 horas e IATF 24 horas mas tarde
obtuvieron en promedio 51,20 % de preñez en vacas con cría al pié, una
condición corporal ³ a 3 puntos (escala 1 a 5), un
período post parto de entre 60 y 75 días. Los mismos autores en vacas cola de
parición reportan una preñez promedio del 46,36%, el tiempo post parto en este
caso fue de entre 45 y 60 días. En otro trabajo (10) evaluamos la tasa de preñez de acuerdo al tiempo de colocación
del CIDR-B, por 9, 8 y 7 días, en todos los casos se inyectó EB 2 mg al momento de colocar el dispositivo y EB 1 mg al retirar el dispositivo.
Los resultados fueron 48,33%, 55,0% y 50,9% para cada tratamiento
respectivamente.
Conclusiones
Controlando
el CL, el desarrollo folicular y la ovulación podemos obtener máxima fertilidad
y realizar programas de IATF. Los trabajos presentados demuestran que es
posible sincronizar el celo y la
ovulación en vaquillonas y vacas en rodeos lecheros o de carne. Todos estos
programas y tratamientos son herramientas muy útiles en los programas que
buscan eficientizar la reproducción en rodeos de carne y leche.
1.
Barros, C.
Comunicación personal. 1998.
2.
Beal WE. Current
estrus synchonization and artificial insemination programs for cattle. J. Anim.
Sci. 1998; 76 (suppl.3): 30-38.
3.
Bó GA. Comunicación
personal. 1999.
4.
Bó GA, Adams GP,
Caccia M, Martinez M, Colazo M, Mapletoft RJ. Actualización del control del
ciclo estral bovino. Bases y métodos para la IA a tiempo fijo. CABIA, 1998.
5.
Bó GA, Adams GP,
Pierson RA, Mapletoft RJ. Exogenus
control of follicular development in cattle. Theriogenology 1995; 43: 31-40.
6.
Bó GA, Caccia M,
Martinez M, Mapletoft RJ. Follicular wave emergence after tratment with
estradiol benzoate and CIDR-B vaginal devices in beef cattle. Proc. 13 th
International Congress on Anim. Reprod., Sydney, Australia, 1996.
7.
Bó GA, Mapletoft
RJ. Programas de inseminación artificial a tiempo fijo en ganado de carne. Proc. II Workshop Reprod. Bov. Tandil, 1999.
8.
Burke JM, de la
Sota RL, Risco CA, Staples CF, Schmitt EJP, Thatcher WW. Evaluation of timed
insemination using a gonadotropin releasing hormone agonist in lactating dairy
cows. J. Dairy Sci. 1996; 79: 1385-1393.
9.
Bussi PJ. IAT, tasa
de preñez en vaquillonas y vacas sincronizadas con SMB y SMB con PGF y PMSG. Proc. III Simp. Int. Reprod. Anim. 1999, 200.
10. Bussi PJ. IAT, tasa de preñez en vaquillonas y vacas
sincronizadas con CIDR-B combinado con PGF y EB. Proc. III Simp. Int. Reprod. Anim. 1999, 201.
11. Bussi PJ. Preñez en vaq. y vacas Brangus sinc. med. Ovsynch.
1998 No publicado.
12. Butler H, Cesaroni G, Mc Dermontt, E, Cano A.
Preñez de vaquillonas inseminadas a tiempo fijo después de un tratamiento con
CIDR asociado con GnRH a con benzoato de estradiol aplicado 0 o 24 hs
postratamiento. Proc. IV Workshop
de Reprod. Bov. Pergamino, 2000.
13. Butler H, Cesaroni G. Proc. II Workshop
Reprod. Bov. Tandil, 1999.
14. Caccia M, Bó GA. Follicle wave emergence following treatment of
CIDR-B implanted beef cows with estradiol benzoate and progesterone. Theriogenology 1998; 49:341.
15. Caccia M, Cutaia L, Moreno D, Bó Ga.
Sincronización del momento de la ovulación en vacas tratadas con CIDR-B,
benzoato de estradiol, progesterona y GnRH. CABIA 1998.
16. Callejas S. Uso de la Hormona Liberadora de
Gonadotrofinas y ProstaglandinaF2 natural o sus análogos para controlar el
ciclo estral. Proc. IV Workshop
Reprod. Bov. Pergamino, 2000.
17. Carcedo J, Alonso N, Menajovsky J, Alvarez C.
No publicado.
18. Colazo M, Iluminati H, Schmitt E, Bartolomé J,
Bó GA. Control del ciclo estral con un agonista de GnRH y PGF en vacas de carne
con cría al pié. Proc. III Simp.
Int. Reprod. Anim. 1999.
19. Crowe MA, Goulding D, Bagusi A, Boland MO,
Roche JF. Induced ovulation in the first post partum dominant follicle in beef
suckler cows using GnRH analogue. J. Reprod. Fert. 1993; 99: 551-555.
20. Davos PM, Josh JT, Heersche G, Miksh DE. Site
of semen deposition and subsequent conception in synchronized and artificially
inseminated (AI) beef heifers. J. Anim. Sci. 1985; 61 (suppl.1): 37.
21. Drobowolsky W, Hafez ESE. Transport and distribution of spermatozoa in
the reproductive tract of the cow. J. Anim. Sci. 31: 940, 1970.
22. Fergusson JD, Galligan DT. Prostaglandin
synchronization programs in dairy herds. 1993; 15: 646-655.
23. Finelli J, Scena C, Cabarcos G, Sampedro D,
Callejas S. Comparación de dos tratamientos hormonales en vaquillonas cruza
cebú en anestro entoradas a los 18 - 20 meses de edad. Rev. Arg. Prod. Anim. Vol. 18 Supl. 1, 339, 1998.
24. Folman Y, Kaim M, Herz Z, Rosemberg M.
Reproductive management of dairy cattle based upon synchronization of estrus
cicles. J. Dairy Sci. 1984; 67: 153-160.
25. Gallager GR, Senger PL. Concentrations of
spermatozoa in the vagina of heifers after deposition of semen in the uterine
horns, uterine body or cervix. J. of Reprod. And Fertility 86: 19-25, 1989.
26. Hanlon DW, Williamson NB, Witchel JJ, Steffert
IJ, Craigie AL. Ovulatory responses and plasma luteinizing hormone
concentrations in dairy heifers after treatment with exogenus progesterone and
estradiol benzoate. Theriogenology 1997; 47: 963-975.
27. IRAC, Proc. II Curso Post-Grado en Reproducción Bovina, 1998.
28. Larsson B. Transuterine transport of
spermatozoa after artificial insemination in heifers. Anim. Reprod. Sci. 12:
115-122, 1986.
29. Larsson B, Larsson K. Distribution of
spermatozoa in the genital tract of artificially inseminated heifers. Acta Vet.
Scand. 26: 385, 1985.
30. Macmillan KL. Proc. II Workshop Reprod. Bov.
Tandil, 1999.
31. Macmillan KL, Watson JD. Fertility diferences
betwen group of sires relative to the stage of estrus at the time of
inseminations. Anim. Prod. 21: 243, 1975.
32. Marshall CE, Graves WM, Meador JL, Swain JB,
Anderson JI. A fertility comparision of uterine body and bicornual semen
deposition procedures in dairy cattle. American Dairy Sci. Asoc. And A. Soc. of
anim. Sci. Combined Annual Meeting. Abst. 1989.
33. Meana Irigoyen G, Zeballos H, Larghi J, Cabodevilla
J, Catalano R, Teruel M, Callejas S. Control del ciclo estral en vaquillonas
para cría; uso de buserelina y dinoprost trometamina. Proc. III Simp. Int. Reprod. Anim. 1999.
34. Moreira F, Risco CS, Pires MFA, Abrose JD,
Drost M, Thatcher WW. Use of bovine somatotopin in lactating dairy cow reciving
timed artificial insemination. J. Dairy Sci. 2000; 83: 1237-1247.
35. Nebel RL, Jobst SM. Evaluation of systematic
breeding programs for lactating dairy cows: a review. J. Dairy Sci. 1998; 81:
1169-1174.
36. Péndola C, Paramidani E. Proc. IV Workshop Reprod. Bov. Pergamino, 2000.
37. Pursley JR, Mee MO, Wiltbank MC.
Synchronization of ovulation in dairy cows using PGF2a and GnRH. Theriogenology 1995; 44: 915-923.
38. Sabbione S, Becerra F. Sincronización de celo
en ganado bovino de carne mediante el uso combinado de un superanálogo de GnRH
(Gestran Plus) y PGF (Arsaprost). Proc. III Simp. Int. Reprod.
Anim. 1999.
39. Scena C, Butler H, Durand M. Eficacia de dos
tratamientos progestágenos para sincronizar celos en vacas Hereford con cría al
pié. Rev. Arg. Prod. Anim. Vol. 18 Supl. 1, 337, 1998.
40. Scena C, Peralta R, Callejas S, Luchelli A.
Combinación de un implante progestágeno, PMSG y destete temporario sobre la
tasa de preñez después de IA sitemática en vacas Brahman en anestro. Rev. Arg. Prod. Anim. Vol. 18 Supl. 1, 338,
1998.
41. SengerPL, Becker WC, Hillers JK. Influence of
cornual insemination on conception rates in dairy cattle. J. Anim. Sci. 66:
3010-3016, 1988.
42. Senger PL, Becker WC, Hillers JK. Effect of
thawing rate and post thaw temperatures on motility and acrosomal maintenance
in bovine semen frozen in plastic straws. J. Anim. Sci. 42: 932-936, 1976.
43. Sullivan JJ. Sperm numbers required for
optimun breeding efficiency in cattle. Proc. 3erd. Tech. Conf. Artif. Insem.
And Reprod. NAAB. 1970, 36-43.
44. Suga T, Higaki S. Studies on uterine secretion
in the cow. II Distribution of spermatozoa and seminal plasma after
intra-uterine inseminations in the reproductivre tract of the cow during
estrus. Bull Nat. Inst. Anim. Ind. (Jpn). 24: 41, 1971.
45. Stevenson J. Sincronización de celos y de
ovulaciones en bovinos de leche y carne. Proc. V Cong. Arg. Reprod. Anim. CABIA y EGP. 2000.
46. Tawagiramungu H, Gibault L, Dufour JJ.
Synchronization of ovarian follicular waves with a gonoadotropin releasing hormone
agonist to increase the presicion of estrus in cattle: E Review. J. Anim. Sci.
1995; 73:3141-3151.
47. Twagiramungu H, Guibault LA, Proulx J,
Villenueve P, Dufour JJ. Influence of an agonist of gonadotropin-releasing
hormone (Buserelin) on estrus synchronization and fertility in beef cattle. J.
Anim. Sci. 1992; 70: 1904-1910.
48. Trimberger GW. Breeding efficiency in dairy
cattle from artificial insemination at various intervals before and after
ovulation. Nebraska Agric.
Exp. Sta. Res. Bull 1948; 153-1-26.
49. Vizcarra JA. Influence a dose, frecuency, and duration of
infuse3d gonadotropin realising hormone on sectretion of luteinizing hormone
and follicle stimulating hormone in nitritionally anestrus beef cows. Domestic
Anim. Endocr. 1999, 16 (3): 171-181.
50. Wilmut J, Moeller AN. Sperm transport into the
oviducts of heifers mated early in estrus. Reprod. Nutr. Dev. 1984; 24: 461.
volver a: principal > Inseminación artificial > inicio página